Content extract
					
					AMINOSAVAK, PEPTIDEK, FEHÉRJÉK Aminosavak szerkezete, fizikai, kémiai tulajdonságai, biokémiai szerepük. Konvenció szerinti rövidítések. Aminosavak szintézise A peptidkötés szerkezete Peptidszintézisek, védőcsoportok, kapcsolási eljárások, a szilárd fázisú technika. A fehérjék primer, szekunder, tercier, illetve kvaterner szerkezete. A Ramachandram diagram A fehérjék csoportosítsa és biokémiai szerepük. Aminosavak szerkezete Az aminosavak amino-, illetve karboxilcsoportot egyaránt tartalmazó vegyületek. Az aminocsoport helyzete alapján megkülönböztethetünk α-, β-, γ--aminosavakat. A köznapi nyelvhasználatban aminosavak alatt általában az α-aminosavakat értjük.  H3N     H3N  COO     H3N  COO    -alanin  -aminovajsav  COO  glicin  Az α-aminosavakban egy szénatom választja el egymástól a karboxil-, és az aminocsoportot. A glicint kivéve ezért minden α-aminosav királis A természetben általában
L-térállású aminosavak fordulnak elő. A természetes L-aminosavak a CIP szabály szerint többnyire (S)-térállásúak. Ez alól kivétel az L-cisztein, ami (R) Ennek oka, hogy a cisztein királis szénatomjához kapcsolódó CH2-SH a CIP nomenklatúra szerint magasabb rendű, mint a COOH. COO H3N H R  R H3N  -L-aminosavak  CH2OH COO  H3N  COO (S)  L-szerin  CH2SH H3N  (R)  COO  L-cisztein  Sav-bázis tulajdonságok Az aminosavakban egyszerre van jelen egy savas jellegű (karboxil-), illetve bázikus jellegű (amino-) csoport, tehát sav-bázis tulajdonságaik tekintetében amfoterek. A molekula karboxilcsoport része általában elég erős sav ahhoz, hogy protonálja a molekula bázikus jellegű részét. Tehát a savas csoport pKa-ja kisebb a bázikus jellegű csoport pKa-jánál Emiatt az aminosavak jellemzően ikerionos (A–)(BH+) formában fordulnak elő. A karboxilcsoport deprotonált, azaz negatív töltésű az aminocsoport pedig protonált, azaz pozitív töltésű.
Ez azt jelenti, hogy bár a molekula össztöltése semleges, a benne található két molekularészlet pozitív, illetve negatív töltéssel rendelkezik. Ennek következtében az aminosavak ionrácsban kristályosodnak, illetve magas az olvadáspontjuk. Az aminosavak oldatban is ionos formában vannak jelen, azonban a molekulák protonáltsága pH függő. Savas környezetben mindkét funkciós csoport protonált formában van jelen. Így az aminosav össztöltése pozitív lesz, tehát az aminosav kationos (HA)(BH+) formában lesz jelen. Bázikus környezetben mindkét csoport deprotonálódik Az aminosav így negatív, anionos (A–)(B) formában lesz jelen. A két véglet között van egy olyan pH érték, amelyen az aminosavmolekulák össztöltése semleges. Ez az ikerionos (A–)(BH+) formára jellemző pH az aminosav izoelektromos pontja (pI). Ez nem feltétlenül pH 7-nél van, hiszen függ az aminosavak oldalláncától is.  1     Az aminosavak titrálási görbéjét
tekintve a fent leírtak jól látszanak. Alacsony pH-n az aminosav 100%-ban (HA)(BH+) formában van jelen. Az a pH, amelyen 50% a kationos, és 50% az ikerionos forma aránya, megegyezik a (HA) csoport pKa-értékével. Az izoelektromos pontnak megfelelő pH-n az aminosav össztöltése semleges, ikerionos formában van jelen. Az a pH, amelyen 50%-ban van jelen az ikerionos és az anionos forma, megegyezik a (BH+) csoport pKa értékével.  Az alanin titrálási görbéje. Forrás: https://chem.libretextsorg  Az aminosav protonáltságának leírása akkor bonyolultabb, ha az aminosav az oldalláncán is protikus csoportot tartalmaz. Példaként az amfoter oldalláncú hisztidint mutatjuk be. HN  HN NH  N  N  NH  OH-  N  N  H+ Stabil aromás kation  Stabil aromás anion  Biológiai funkciók Biológiai szempontból az α-aminosavaknak van a legnagyobb jelentősége, hiszen eukariótákban ezek alkotják a sejtműködés szempontjából kulcsfontosságú makromolekulákat, a
fehérjéket. Az eukarióta szervezetekben a glicinen kívül 19 fehérjeépítő L-α-aminosav fordul elő, melyeket oldalláncuk alapján csoportosíthatunk. Nemzetközi megállapodás alapján ezen aminosavakat nevükből képzett hárombetűs rövidítéssel jelölhetjük, bonyolultabb esetben egybetűs rövidítés is használható. Mindezt az alábbi ábra foglalja össze. A számunkra szükséges aminosavak egy részét szervezetünk képes előállítani, de vannak olyan aminosavak, melyeket táplálékkal kell bevinnünk. Az aminosavak fehérjeépítő szerepük mellett egyéb fontos funkciókat is elláthatnak. A glutaminsav, illetve a GABA (γ-aminovajsav) például egymással ellentétes hatású ingerület átvivő anyagok, a β-alanin pedig a koenzim-A alkotórésze.  2     H3N  COO Q  Név  Kód  pI  Oldallánc (Q)  Név  Oldallánc (Q)  pI  Kód  Poláris aprotikus oldalláncú aminosavak Szerin Ser (S)  5,68  -CH2OH  Cisztein Cys (C)  5,05  -CH2SH  Me  Treonin Thr (T) 
5,60  H3C  iPr  Tirozin Tyr (Y)  5,64  iBu  Aszparagin Asn(N) 5,41  -CH2CONH2  Glutamin Gln (Q) 5,65  -CH2CH2CONH2  Metionin Met (M)  -CH2CH2SCH3  Alifás oldalláncú aminosavak Glicin Gly (G)  6,06  -H  Alanin Ala (A)  6,11  -CH3  Valin Val (V)  6,00  H3C  OH  CH3 Leucin Leu (L)  6,01  HO  H3C CH3  Izoleucin Ile (I)  6,05  Prolin Pro (P)  6,30  CH3  sBu  H3C  5,74  Savas oldalláncú aminosavak N H2  COO (aminosav képlete)  Aszparaginsav Asp (D) 2,85  -CH2COOH  Glutaminsav Glu (E)  -CH2CH2COOH  3,15  Bázikus oldalláncú aminosavak Aromás apoláris oldalláncú aminosavak Fenilalanin Phe (F) 5,49 Triptofán Trp (W)  5,89  -CH2Ph H N  Lizin Lys (K)  9,60  -[CH2]4-NH2  Arginin Arg (R)  10,76  -[CH2]3-NH  Bn  HN  NH2  Amfoter oldalláncú aminosavak Hisztidin His (H)  H N  7,60  Bázikus N Savas N  N  Előállítás Az aminosavak kémiai szintézise azért fontos kérdés, mert a fehérjékből történő kinyerésük nem robosztus, viszont számos esetben nagy mennyiségű, tiszta
aminosavra lehet szükség (gyógyszeripar, élelmiszeripar, peptidszintézisek). Az alábbiakban a fontosabb módszereket vesszük át. 1. Aminocsoport beépítése a karbonsav α-helyzetébe A karbonsavból kiindulva formálisan az α-szénatomon lévő H-atomot cseréljük le aminocsoportra. Ez közvetlenül nem lehetséges, először halogénatomot kell beépítenünk Az α-szénatomra történő bróm beépítése például úgy lehetséges, hogy a karbonsavat reagáltatjuk tionil-kloriddal (SOCl2 savkloridot előállítva), majd brómmal (α-brómozott savklorid keletkezik), végül hidrolízissel kapjuk meg az α-brómozott savat (lásd: α-helyettesített savak előállítása). 3     A halogénezett savat például ammóniafeleslegben (a), alakíthatjuk tovább. Nagyon fontos, hogy ez esetben az ikerionos szerkezet keletkezése miatt lesz szelektív a reakció, a primer aminocsoport így nem tud tovább alkileződni. A Gabriel-szintézis alkalmazásakor észterből kell
kiindulnunk (a ftálimid-sót protonálná a sav), illetve a ftálimidet vissza kell nyernünk a reakció után, hogy növeljük a reakció atomhatékonyságát. E módszerrel elsősorban olyan aminosavakat tudunk előállítani, amelyekhez a kiindulási karbonsav (pl. ecetsav, propionsav, izovaleriánsav) rendelkezésre áll. ε-Kaprolaktámból kindulva az εaminocsoportot benzoil-kloriddal védve, ugyancsak a Gabriel-szintézist alkalmazva kaphatjuk a lizint. a) Ammóniafelesleggel  Hlg  R  NH3 felesleg  R  H3N  COOH  COO  Gly, Ala, Val b) Gabriel-szintézissel (ftálimiddel) R O N K  Br  O COOEt  COOEt N  DMF Melegítés  O  R H+/H2O  H3N  COOH  R O  1. NH3 2. KOH  Gly, Ala, Val  COOH COOH  NH  1. SOCl2 2. Cl2 3. EtOH  1. H+/H2O 2. PhCOCl/ KOH BzHN  [CH2]4  COOH BzHN  COOEt  [CH2]4  O  Cl O N K O  H3N  [CH2]4  COO NH3  H+/H2O BzHN  [CH2]4  COOEt NFt  Lys  2. Szénlánchosszabbítás és aminocsoport beépítés az aktivált ecetsav α-szénatomján Az előbbi módszernek az a
hátránya, hogy a megfelelő karbonsav kiindulási anyagnak rendelkezésre kell állnia, amely bonyolultabb oldalláncú aminosavaknál nem triviális. Karbonsavak α-szénatomjára nem tudunk közvetlenül szénatomot kapcsolni, erre alkalmas módszerek a korábban is tanult acetecetészter-, illetve malonészter-szintézisek.  4     COOH  a) Acetecetészter szintézis  R  COOH  R  COOH NH2  R  1. NaOEt 2. RBr  COOEt  COOEt O  O  iBuONO  R  cc.H2SO4 O  PhN2+ClNaOH 1. ccNaOH 2. H+ COOH  R N  NH Ph  N  COOEt O  R  O  N  COOEt N Ph  R  H2/Pd/C  H2/Pd/C  COOH N OH  R  COO NH3  Val, Leu, Ile, Phe  Az acetecetészter-szintézis során elsőként az oldallánc beépítése történik meg, majd ezt követi az aminocsoport kialakítása. Ehhez pozitív töltésű nitrogéntartalmú reagenst kell alkalmazni, ami egyrészt lehet az izobutil-nitritből (iBuONO) savas közegben képződő NO(+), vagy másrészt a benzoldiazónium-klorid. A köztitermék nitrozo-, illetve diazenilszármazék az
erősen savas, illetve lúgos közegben spontán retro-Claisen reakcióval fragmentálódik. A keletkezett karbonsav-α-oximot, illetve -α-fenilhidrazont katalitikus redukcióval alakítjuk a kívánt végtermékké. A malonészter-szintézis során fordított sorrendet alkalmazunk, először történik a védett aminocsoport kialakítása, és ezt követi az oldallánc kiépítése. A savas közegű nitrozálással kialakított oxim katalitikus redukciója során ecetsav-anhidridet alkalmazunk, hogy a keletkező aminocsoportot in situ acetilezéssel védjük. Ezt követően az oldalláncot bázikus közegben alkilezéssel (RBr), aldehiddel (RCHO), vagy telítetlen savszármazékkal (pl. akrilnitril) történő reakcióval alakítjuk ki. A végterméket vagy savas hidrolízissel kapjuk, vagy további reakciólépések is szükségesek. Pl: A nitrilcsoportot katalitikusan redukáljuk, a keletkező amino-észter spontán laktámgyűrűvé záródik. A savas hidrolízissel kapott
ornitint ciánamiddal lehet a végtermék argininné alakítani. A malonészter-szintézist kombinálhatjuk a Gabriel-szintézissel is. Ez esetben a brómmalonésztert reagáltatjuk ftálimid-kálium-sóval. Ezt követően az oldalláncot bázikus közegben alkilezéssel (RBr), aldehiddel (RCHO), vagy telítetlen savszármazékkal (pl. akrilészter) történő reakcióval alakítjuk ki. A végtermékeket savas hidrolízissel kapjuk  5     COOH  b) Malonészter szintézis  H2N  COOH  R  COOH NH2  1. NH2 beépítés nitrozálással NaNO2 EtOOC  EtOOC  COOEt HCl  EtOOC  COOEt  COOEt NOH  NO  COOEt  EtOOC Ac2O H2/Pt/C  NHAc  NaOEt  AcHN  COOH H3N  H+/H2O  O  H2N ornitin  CN  COOEt  Na  Ni/H2  EtOOC  N H  COOEt C NHAc  CH2CHCN  EtOOC  RCHO  1. RBr 2. H+/H2O  NH2CN Bázis H3N  COO  H+/H2O  COOH  HO EtOOC  H3N Arg  R  HN HN  OH  CH2OOEt C NHAc  R COOEt  C NHAc  R  COO NH3  NH2  Ser (R=H), Thr (R=Me) Val, Leu, Ile, Phe  2. NH2 beépítés ftálimiddel O EtOOC  COOEt  Br2  EtOOC  CCl4  COOEt 
COOEt  N O  Br  COOEt O  N  K NaOEt  O O  O  COOEt  COOEt N C COOEt  COOEt N C COOEt O  O H+/H2O  COOEt 1. RCHO  1. RBr 2. H+/H2O  2. H+/H2O  H3N  COOH  H3N R  Glu  COOEt  Na  COOH Val, Leu, Ile, Phe OH  R  COO NH3  Ser (R=H), Thr (R=Me)  6     3. Addíciós reakciók Telítetlen karbonsavra közvetlenül addícionáltatható az ammónia (lásd: aszparaginsav előállítása). Számos esetben azonban az aminosav-szintézis köztitermékének kialakítását végzik addícióval. NH3  COOH  COO  HOOC  HOOC  HOBr COOH  CHO  HO  MeSH  Asp  NH3  COOH  1. EtOH/H+  Br  2. Ftálimid-K 3. H+/H2O  CHO MeS  HO  COO Thr  NH3  Strecker-Zelinszkij NH4Cl/ KCN  COO MeS  NH3  Met  4. Strecker-Zelinszkij szintézis: amino- és karboxilcsoport one-pot kiépítése A StreckerZelinszkij-, vagy rövidebben csak Strecker-szintézis során oxovegyületeket reagáltatunk NH4Cl-dal és KCN-dal. A reagens valójában az in situ keletkező instabil NH4CN. Az enyhén savas pH (erősen savas pH-n HCN távozna a
reakcióelegyből) és az egyensúly eltolása érdekében ammónium-klorid felesleget kell alkalmazni. A köztitermék aminosav-nitril további sav hozzáadására könnyen hidrolizál, kialakítva ezzel az α-aminosav terméket. NH4Cl, KCN in situ: O X  NH4CN  NH3 + HCN  NH2  NH2 X  X  CN aminosav-nitril  H+/H2O  NH3 Phe, Tyr X=H, OH  X  COOH  7     5. Azlakton szintézis: oldallánc beépítése a glicin α-szénatomjára A szintézis során a glicinre, mint a legegyszerűbb aminosavra aldehidek segítségével építjük be a megfelelő oldalláncot. Ehhez a glicin aminocsoportját védeni, az α-helyzetű CH2csoportot aktiválni kell A védést és aktiválást az aminocsoport benzoilezésével, és az Nbenzoilglicin (hippursav) ecetsav-anhidriddel, mint vízelvonószerrel történő gyűrűzárásával oldjuk meg. Azolakton gyűrűre kondenzáltathatóak aromás gyűrűt tartalmazó aldehidek O H2N  BzHN  COOH  COOH  PhCOCl NaOH  O  N  Ac2O NaOAc  RCHO NaOAc Ac2O  R Phe/ Thr/
Trp/ His  COO-  1. Na/ Hg/ KOH 2. H+/ H2O vagy 1. H2/Pt/C 2. H+/ H2O  NH3+  O R N  O  6. Rezolválás A fenti módszerek egyike sem alkalmas enantiomertiszta termékek előállítására. Ehhez a korábban előállított racém vegyületet rezolválni kell. Egy igen gyakori módszer a rezolválásra a diasztereomer sópár-képzés. Ez aminosavak esetén azért problémás, mert egyszerre tartalmaznak savas, illetve bázikus csoportot. Sóképzés előtt ezért védeni kell valamelyik csoportot, ha például az alanin esetén az aminocsoportot acilezéssel védjük, királis bázissal (sztrichnin, brucin) megoldható a rezolválás. H2N  BzHN  COOH  COOH  brucin  BzHN  COO  PhCOCl NaOH  csapadék (Bz-L-Ala-só oldatban marad)  D,L-Ala sztrichnin  +H3N  brucin-H  COO-  H+/ H2O/ OH-  H+/ H2O/ OH+H3N  BzHN  COO  COO-  sztrichnin-H  csapadék (Bz-D-Ala-só oldatban marad)  D-Ala  L-Ala  A rezolválás során a rosszabbul oldódó sót kiszűrjük az oldatból, és az átkristályosított
anyagból savas hidrolízissel kapjuk az enantiomer-tiszta terméket. 8     Peptidek, fehérjék Bevezetés A peptidek 2-50 aminosavegységből felépülő polimerek. Fehérjéknek az 50-nél több építőegységből felépülő polipeptideket (proteinek) és a nemcsak polipetid-típusú alkotórészeket tartalmazó komplex molekula-társulásokat nevezzük. Az aminosavak a karboxil- és az aminocsoportjaik révén peptidkötéssel kapcsolódnak össze. A peptidkötés a CO és az NH csoport között lévő kovalens (savamid) kötés. Nagyon fontos, hogy a C(O)NH szerkezeti rész egy síkban van. Ennek oka az, hogy a nitrogén nemkötő elektronpárja, valamint az oxigén π-elektronjai delokalizálódnak. Az N-terminális a peptid szabad aminocsoportja, a C-terminális a szabad karboxilcsoportja. A peptideket alkotó aminosavakat az N-terminálistól kezdve soroljuk fel Az alkotó aminosavaknak a hárombetűs kódját használjuk, hosszabb peptidek esetén pedig az egybetűs
kódokat. R1 N-terminális  H N  H3N O  COO  C-terminális  R2  peptidkötés  H C N O delokalizált elektronrendszer  Peptidszintézisek A peptidek szintézise az alkotó aminosavak kapcsolásával történik. Az aminosavak azonban bifunkciós vegyületek. Két aminosav kapcsolásával tehát több termék is keletkezhet Ezért a leendő dipeptid N-terminális, valamint a C-terminális csoportját le kell védenünk, a kapcsolódó karboxil-csoportot pedig aktiválni kell. A védőcsoporttal szemben alapvető elvárás, hogy a mind a kiépítési, mind az eltávolítási reakció minél egyszerűbb legyen, illetve jó termeléssel menjen végbe. Q Lys Q Q-Leu  Ala-Q  N-terminálison védett as.  C-terminálison védett as.  Q-Leu-Ala-Q Dipeptid  Q-Leu-Ala  . Oldalláncon is védett as.  NH2-védése A következő táblázat összefoglalja az aminocsoport védésére alkalmas reakciókat, illetve a védőcsoportok eltávolítását.  9     Név  Kiépítés  Eltávolítás  Termék O 
O  Benziloxikarbonil-csoport (jele: Z)  terc-Butoxikarbonil-csoport (jele:Boc)  K2CO3  Z  tBuOCON / Et N 3 3  vagy (tBuOCO)2O/ KOH O  Fluorenilmetoxikarbonil csoport (jele: FMOC)  Cl  Boc  H N  Pd/C/H2  H N  H+  Cl  O  FMOC  H N  Me2NH  Et3N  O Ftaloil-csoport (jele:Ft)  O  Ft N  MeNHNH2  H N  Na/NH3  O  Tozil-csoport (jele: Tos, vagy Ts)  SO2Cl Piridin  Tos  COOH-védése Az alábbi táblázat ábra összefoglalja a karboxilcsoport védésére alkalmas reakciókat, illetve a védőcsoportok eltávolítását. Név  Benzil-csoport (jele: Bn)  Metil-csoport (jele: Me)  Kiépítés  Termék  Eltávolítás  COOBn  OH  Pd/C/H2 TosOH  MeOH SOCl2  COOMe  NaI  10     Uretán-típusú védőcsoportok kiépítése és eltávolítása: O R H3N  Ph  O  COO  Ph  K2CO3 R  O Ph  O  Cl  O  N H  COOH  H2/Pd/C  peptid  N H  O  kapcsolási reakciók  R  Ph  R  CO2  CH3  peptid  H2N  O  O  O R  O  kapcsolási reakciók  R  O  O 2  H3N  COO  O  KOH R  O O  N H TFA  N H  peptid  H2N  O  O  O O  Cl  O  H 
R  O COO  R  CO2  peptid  H  H3N  COOH  kapcsolási reakciók  R N H  COOH  Et3N  O  CO2  R  O  H  N H  peptid  R Me2NH  O  peptid  H2N O  Ftaloil-védőcsoport kiépítése és eltávolítása O O  R kapcsolási reakciók  R H3N  O N  O  COOH  COO O O  O  R peptid  N  MeNHNH2  Me N H2N NH  O O  R peptid O  O  11     Tozil-védőcsoport kiépítése és eltávolítása SO2Cl R H3N  kapcsolási reakciók O O R S N COOH H  Me COO  Me  Py O O R S N H Me  SO2H H2N  peptid Na/NH 3 O  Me  R peptid O  Észter-típusú védőcsoportok kiépítése és eltávolítása: SO3H R H3N  SO3  Me COO  H3N  Me  PhCH2OH R  Peptid  H2/Pd/C  Peptid  O  R H3N  COOBn  R OBn  N H  kapcsolási reakciók  R  MeOH  H3N  + PhMe  O  R  SOCl2 COO  OH  N H  kapcsolási reakciók COOMe  Cl R Peptid  N H  R OMe O  NaI  Peptid  N H  O O  Na  + MeI  Fontos megjegyezni, hogy az észterek aminocsoportjának mindig protonált formában kell lennie (pl.: tozilát-, klorid-só), az önkapcsolás elkerülése miatt
Aktiválás A karboxilcsoportot valamilyen erősebb acilezőszerré (pl.: savklorid, savazid, vegyes anhidrid) alakítjuk.  12     QHN  COCl  Savklorid  R  PCl5 MeOH/ SOCl2 QHN  QHN  COOH  H2N-NH2  COOMe  QHN  R  R  CONHNH2 R NaNO2/ HCl  O Cl  OMe  O QHN  O  QHN  Savazid  O OMe  CON3 R  Savanhidrid  R  Kapcsolás 1. Hagyományos módon Ez esetben a megfelelően védett és aktivált aminosavakat egyesével reagáltatjuk, a köztitermék peptideket pedig kipreparáljuk, Lineáris szintézis során az alkotó aminosavakat sorban kapcsoljuk hozzá az egy aminosavval rövidebb peptidre. Itt a hátrány, hogyha például egy lépésre 90%-os termelést feltételezünk, akkor az n aminosavból álló peptidre a végső termelés csupán 0,9n lesz. Konvergens szintézisnél külön-külön szintetizáljuk a peptidek nagyobb darabjait, majd ezeket kapcsoljuk össze. Ekkor a termelés magasabb lesz A QHN  R2 O  R1  H3N Cl  O  O  Et3N  QHN  OR  R1  R2 O  N H  OR  y = 90% Konvergens szintézis A
C E G  B D F H  AB  A  ABCD  CD EF  Lineáris szintézis B  AB  C  ABC  D  ABCD  GH  y=0,93  ABCDE F  ABCDEFGH EFGH  E  ABCDEFGH  H  ABCDEFG  G  ABCDEF  y=0,97  2. Leuchs-anhidriddel A Leuchs-anhidrid képzése során ugyanazzal a reagenssel a karboxilcsoportot aktiváljuk az aminocsoportot pedig védjük. Nagy előnye a hagyományos módszerhez képest, hogy a kapcsolás során a védő-aktiváló csoport szén-dioxidként távozik, nem kell tisztítani a köztes termékeket, ezért jobb termelés érhető el. Így kb 10 aminosav kapcsolható össze lineáris módon, amely 10 tagú fragmenseket konvergens szintézisstratégia alkalmazásával hagyományos úton kapcsoljuk össze hosszabb peptiddé. 13     O H3N  COO  R2  +  R1  HN  R2  Et3N  O  O Leuchs-anhidrid  Et3N H3N COO  R3  10-tagú peptidek szintézise Lineáris Leuchs-szintézis A  B  BA  HGFEDCBA  C  CBA  H  D  DCBA  E G  GFEDCBA  J  R1  EDCBA  pep1  F  pep2  FEDCBA  pep3  H N O  COO R1  pep2-pep1 peptid pep4-pep3  pep4 
pep1  JIHGFEDCBA  N H  R2  10-tagú peptidek kapcsolása Konvergens szintézis  I IHGFEDCBA  + CO2  O O O  R2 H3N  COO  R3 HN  OMe  O  O  O Cl  H N  H3N  hasonlóképpen pep2, pep3 és pep4 fragmens  3. Szilárd fázisú szintézis A módszer lényege, hogy a C-terminális aminosavat észter-kötéssel szilárd fázisú polimerhez kötjük. A soron következő, aminocsoportján védett aminosavat DCC-vel (diciklohexilkarbodiimid) együtt adagoljuk. A DCC in situ aktiválószerként működik, vegyes anhidridet képez az aminosavval. A kapcsolási lépés után az N-védőcsoportot eltávolítjuk, majd a következő aminocsoportján védett aminosavat kapcsoljuk a polimeren növekedő peptidlánchoz. A végén HF-dal hasítjuk le a termék peptidet a szilárd fázisról R2  Cl N C N  BOC  DCC R2  R1 H3N  BOC  Et3N COO  N H  O  N  R1 NH2  HF .  N H  H N  BOC  R2  TFA R1  COOH O DCC  O N H  O  H H N C N O DCU R3 BOC  Termék  in situ aktiválás  O  O  F  COOH  HN  O  R2 O  N H  O  O N H 
NH2 R2  14     A módszer előnye, hogy folytonos-átfolyásos üzemű csőreaktorban automatizálható; a reagensek feleslege, illetve a melléktermékek az szilárd fázisról könnyen lemoshatóak; illetve a reagensoldat recirkuláltatásával a konverzió nagy reagensfelesleg alkalmazása nélkül is növelhető. Így az egyes kapcsolások során közel 100%-os termelés érhető el Ezzel az eljárással 100-nál több aminosavból álló peptidlánc is szintetizálható. 4. Bioszintézis Teljes fehérjemolekulák legújabb szintézismódszere az itt részleteiben nem ismertetett bioszintézis. Ehhez először a fehérje aminosav-sorrendjét kódoló m-RNS-t állítják elő szilárdfázisú szintézis alkalmazásával, majd a kész m-RNS-t megfelelő baktériumsejtbe juttatva szintetizáltatják a fehérjét. Oldalláncok védése Egyes esetekben a szelektivitás megőrzése érdekében szükség lehet az oldalláncon lévő funkciós csoportok védésére is. Az alábbi ábra a
védőcsoportok kiépítését, illetve eltávolítását mutatja be.  Cisztein Q NH OOC  Q NH  Na SH  kapcsolási reakciók  BnCl  OOC  S Bn  BnCl  Q NH  R  pep  S  Bn  Na  pep  NH3  SH  Szerin / Treonin Q NH  R  OOC  OH  BnOOC  kapcsolási reakciók  Q NH  OH  H  BnOOC  TFA  R  R  H2/Pd/C  OtBu  Q NH  R  OOC  OtBu  R pep  pep OtBu  vagy HF  OH  Arginin Q NH 3  OOC  NH2  HN  HNO3  Q NH  H2SO4  OOC  NH  Lizin  H2N  H3N  CuSO4  OOC  NH2  Z HN  O  4  O  H2N O O Cu NH2  4  O2N kapcsolási reakciók O2N H2/Pt/C NH 3 pep pep NH 3 3 HN HN HN NH NH  BnO  Cl  NaHCO3  4  NH2 NH  O  H2N O O Cu NH2  H2S  H3N 4  OOC  HN Z  O  O  4  4  HN Z  H2N kapcsolási reakciók  pep  4  HN Z  H2/Pd/C  pep  4  NH2  15     Aszparaginsav / Glutaminsav HOOC H3N  CuSO4 COOH  n=1,2  O BnI  H2N O O Cu NH2  n  OOC  BnOOC n  n  O  H2N O O Cu NH2  NaHCO3  H2S  H3N n  OOC  COOBn  O  O  n  n  BnOOC  HOOC kapcsolási reakciók  pep  n  H2/Pd/C  COOBn  pep  n  COOH  A fehérjék szerkezete A fehérjék primer (elsődleges)
szerkezete az aminosav-sorrendjük. A DNS a primer szerkezetet kódolja, és az aminosav-sorrend megszabja a fehérje további szerkezeti tulajdonságait is. A primer szerkezet meghatározása hagyományosan a peptid teljes hidrolízisével történhet. A leggyakrabban alkalmazott módszer az itt részletesen nem ismertetett Edman-lebontás. Ennek során az N-terminális aminosav felől egyesével lehasítjuk és azonosítjuk az aminosavakat (maximum 50 aminosav-egységig alkalmazható). Az ennél több aminosavból felépülő fehérjéket először rövidebb peptidekre kell bontani, ehhez az egyes peptidkötéseket szelektíven kell elhasítani kémiai, vagy enzimatikus módszerekkel. Az egyes aminosavak azonosítására hatékonyan használható fel a HPLC-MS analitika. Újabban bioinformatikai módszerekkel, a kódoló génszakaszok bázissorrendjéből határozzák meg a fehérjék aminosav-szekvenciáit. A fehérjék szekunder (másodlagos) szerkezetén a fehérjemolekula
peptidgerincének, a peptidkötések között létrejövő hidrogénkötések által stabilizált, lokális konformációját értjük. A legfontosabb szekunder szerkezeti elemek a periodikus szerkezetű hélix, és redő, illetve az aperiodikus kanyar és hurok.  Az α-hélix egy 18 egységenként ismétlődő jobb- (αR) vagy ritkábban balmenetes (αL) spirál alakú szerkezeti rész. A szerkezetet a spirálban egymás felett helyet foglaló peptidkötések közt kialakuló intramolekuláris H-hidak stabilizálják. Ugyancsak helikális, de eltérő menetemelkedésű szerkezet a π-hélix. 16     A β-redő két, vagy több egymással párhuzamosan futó (azonos, vagy különböző peptidmolekulához tartozó) peptidlánc részvételével létrejövő redőzött lemezszerű szerkezet, amelyet ugyancsak a peptidkötések között létrejövő intra- vagy intermolekuláris H-hidak stabilizálnak. β-paralell szerkezet esetén a peptidláncok azonos, míg a β-antiparalell szerkezet
esetén ellentétes irányúak. A másodlagos szerkezetet a sík szerkezetű (a karbonil szénatom és az amid nitrogénatom is sp2-es hibridállapotú) peptidkötések egymáshoz képesti elfordulásával jellemezhetjük. Hat-hat atom van egy síkban, mely síkok az sp3-as hibridállapotú α-szénatom (Cα) kötései körül elfordulhatnak. A rotáció mindkét irányban megengedett, ellenben a rotációt az oldalláncok korlátozzák. Emiatt minél hosszabb a peptidlánc, annál inkább rögzítettebb a jellemző konformáció. A Cα atom körüli rotációkat a ψ (karbonil C-atom felé) és ϕ (amid N-atom felé) torziós szögekkel jellemezhetjük. A fehérjékben jellemzően előforduló torziós szögek ábrázolására alkalmas a Ramachandram-diagram. Az alábbi ábrán jól látszik, hogy számos konformáció nem előnyös, így a diagramon üres tartományok is találhatóak. Az előzőekben ismertetett periodikus szerkezetek jellemző torziós szögtartományai: 
αR-hélix: ϕ < 0°, –60° < ψ < 0°  αL-hélix: ϕ > 0°, 60° > ψ > 0°  π-hélix: ϕ < 0°, ψ ~ –60°  β-redő: ϕ < 0°, ψ > 60°  A tercier (harmadlagos) szerkezet a fehérjemolekula oldalláncok helyzetét is tartalmazó tényleges térbeli elrendeződése, melyet az oldalláncok közötti diszulfid- és Hhidak, van der Waals kölcsönhatások és Coulomb erők tartanak össze. Megkülönböztetünk globuláris, illetve fibrilláris fehérjéket. A globuláris tercier struktúrájú fehérje (pl: enzimek) minden irányban kb. azonos kiterjedésűek A fibrilláris fehérjék (pl: α-keratin) a tér egyik irányában nagyobb kiterjedésűek, mint a másik kettő irányban. 17     A kvaterner (negyedleges) szerkezeten több protein és esetleg nem peptidtípusú alkotórész (prosztetikus csoport, koenzim) részvételével kialakuló diszulfid- és H-hidak, van der Waals kölcsönhatások és Coulomb erők által összetartott komplex
szerkezeteket értjük. A hemoglobin pl. négy proteinből és négy hem prosztetikus csoportból létrejövő fehérje A fehérjék biológiai funkciói, csoportosítása A fehérjék a 20 féle fehérjealkotó α-L-aminosavból felépülő makromolekulák. A fehérjék csoportosítása többek közt történhet funkciójuk szerint, vízoldhatóságuk szerint (pl: az albumin vízoldható), stb. Összetétel szerint megkülönböztetünk proteineket (csak aminosavból épül fel), valamint proteideket (aminosavakon kívül egyéb szerkezeti elemeket is tartalmaz). Számos létfontosságú sejtfunkció köthető fehérjékhez, ezek közül néhányat alább sorolunk fel.          Biokatalizátorok: az enzimek szerepe a sejtekben lejátszódó folyamatok aktiválási energiájának csökkentése. Szűk pH és hőmérséklettartományban működnek. Szubsztrát-, kemo-, regio- és sztereoszelektivitás jellemző rájuk Vázanyagok: pl. a miozin az izmokban fordul
elő; a kollagén a bőr és a csontok mátrixa; az α-keratin a haj és a gyapjú jellemző fehérjéje. Az immunrendszer működésében vesznek részt: az immunoglobulinok antigének (idegen fehérjék) megjelenésekor termelődnek. Jellegzetes Y alakjuk van. A rövidebb szál felel a felismerésért, a hosszabb szál a makrofágokhoz (nagy falósejt) kapcsolódik, amelyek az idegentestek (vírusok, baktériumok, rákos sejtek, stb.) lebontását végzik Információ átvitelben vesznek részt: pl: a rodopszin a látás során. A szabályozásban vesznek részt: pl. az agyalapi mirigyben termelt hormonok Tápanyagforrások: pl. a növényi magvak és a tojások fehérjéi Anyagtranszportban vesznek részt: pl. a hemoglobin az O2/CO2 transzport fehérjéje. A hemoglobinban helyet foglaló négy porfinvázas prosztetikus csoport egy-egy O2/CO2 molekula szállítására képes.  A porfinvázas hem szerkezete 18